Downstream-behandling (DSP) er rækken af enhedsoperationer efter afslutningen af cellevækst og -ekspansion og den afsluttede produktion eller syntese af lægemiddelstoffer eller andre komponenter. Downstream-forarbejdning har til formål at isolere, rense og koncentrere det tidligere syntetiserede lægemiddelstof (DS) eller et andet produkt fra bulkdyrkningsmatrixen.Historisk set er der blevet investeret i at forbedre udbyttet og titeren opstrøms, hvilket gør udviklingen af biologiske lægemidler mere økonomisk. I tidligere år blev downstream-processer ikke behandlet på samme niveau og kræver nu yderligere optimering.
Biofarmaceutisk downstream-behandling refererer til genvinding og oprensning af et lægemiddelstof fra naturlige kilder, såsom dyre- eller bakterieceller. Biofarmaceutisk DSP er anvendelig i monoklonale antistoffer (mAb) eller proteinprocesser og fremstilling af oligonukleotider, polysaccharider, forskellige vacciner, biokonjugater, genterapier og celleterapiprodukter.
Downstream-behandling kan omfatte indledende formuleringsaktiviteter, hvilket betyder overgangen fra DS til lægemiddelprodukt (DP). Vigtige overvejelser omfatter styring og måling af produktkvalitetsattributter, flere procesparametre, kilder og mængder af urenheder, affaldsstrømme og biologiske farer.
DSP-aktiviteter udføres på procesudviklings-, pilot- og produktionsvægte i laboratorieskala og hjælpes af procesanalytisk teknologi (PAT) og MSAT-teams (Manufacturing Science and Technology), der fokuserer på procesoptimering, opskalering og fejlfinding. Sammenlignelig downstream-behandling på opdagelsesbiologiske skalaer eller tidlige stadier af high-throughput målscreening er ikke så almindelig, selvom den kan udføres på samme måde. i princippet.
Denne vejledning diskuterer, hvordan forskere bruger procesanalytisk teknologi (PAT) til at transformere daglige arbejdsgange og forbedre downstream-processer betydeligt. Emnerne omfatter:

Inline-partikelstørrelsesanalysatorer, såsom ParticleTrack™ med FBRM-teknologi®, måler partikelakkumulering og størrelsesfordeling af cellebouillonfoder, der går ind i eller undslipper filtre og kan give kapacitetskorrelation eller feedbackkontrol for at minimere procesafbrydelser. EasyViewer™ med Image2Chords™ udfører billedanalyse og udtrækker partikelakkumulering, størrelsesfordeling og morfologi fra tidsopløste inline-billeder af processen. Placeret over eller under filtre kan EasyViewer give kapacitetskorrelation eller feedbackkontrol, men er mest værdifuld, når den anvendes til årsagsanalyse, karakterisering og morfologi.

Metoden og strategien for indfangning ændrer sig lidt afhængigt af målmolekylets art. Antistoffer fanges af affinitetsharpikser såsom Protein A og Protein G samt nogle andre selektivt konstruerede metoder. Ikke-antistofproteiner og oligonukleotider fanges ofte ved ionbyttekromatografi (IEX). Produkter som polysaccharider og komplekse glykanstrukturer fanges ofte ved hydrofob interaktionskromatografi (HIC) eller omvendt fasekromatografi (RPC).
De vigtigste målemål under kromatografi omfatter maksimering af produktets bindingskapacitet til kolonnen, målt som massen af det produkt, der er lagt på kolonnen (kolonnebelastning), minus massen af det produkt, der slipper ud af søjleudløbet (kendt som "gennembrud"). UV er den mest almindelige metode til produktmåling, der bruges i vid udstrækning til protein- og DNA-måling. Alternative metoder til produkt- og ikke-produktmålinger er også mulige. Inline FTIR-spektroskopi kan bruges til kvantificering og diskrimination af komponenter såsom overfladeaktive stoffer, almindelige sukker- eller aminosyrebuffere, lipider, konjugerede produkter og endda produkter med variable konformationsstrukturer, såsom fragment-, monomer- eller aggregerede former af mAbs. FTIR bruges oftest ud over UV, når UV alene ikke er i stand til at måle vigtige ikke-protein/ikke-nukleinsyrekomponenter.
Prøveudtagningshastigheden og detektionsgrænsen (LoD) med in-situ FTIR-spektrometre såsom ReactIR™ er fordelagtige til primær indfangningskromatografi, der registrerer flere målepunkter inden for hurtigt eluerende toppe eller fraktioner, mens der kvantitativt differentieres mellem flere komponenter. Inline FTIR-spektroskopi gør det muligt for brugere at overvåge variable feed-input samt harpikskvalitet og levetidsydelse, identificere og fingeraftrykseluere komponenter og eliminere forsinkelser i modtagelse af analytiske resultater for at træffe datadrevne beslutninger i realtid.

Ultrafiltrering (UF) bruges ofte i downstream-biobehandling til at koncentrere en fortyndet produktstrøm. Ultrafiltrering adskiller molekyler i en opløsning baseret på membranens porestørrelse eller molekylvægtsafskæring. Diafiltrering (DF) bruges oftest til at udskifte produktet til en ønsket buffer (f.eks. fra en elueringsbuffer til en endelig formuleringsbuffer).
Ultrafiltrering og diafiltrering (tilsammen kendt som bufferudveksling) bruger typisk Tangential Flow Filtration (TFF), hvor foder strømmer parallelt med membranoverfladen i stedet for vinkelret på overfladen (fig. 3). Bufferudveksling er fortsat en meget manuel operation, der sjældent optimeres. Produktkoncentrationen analyseres generelt ved en form for UV-spektroskopi, enten enkeltstående, som en detektor til HPLC eller som en variabel vejlængdemetode.
Der opstår flere udfordringer i processen med bufferudveksling:
In-situ infrarød og Raman-spektroskopi gør det muligt at analysere flere komponenter samtidigt med større præcision og dynamisk rækkevidde og uden de forsinkelser, der er forbundet med offline-analyse. In-situ FTIR-spektroskopi med ReactIR kan give mange fordele under bufferudveksling:
Automatiserede reaktorer som EasyMax™ acceler procesudviklingen med op til 80 % gennem indsamling af eksperimentelle data, nøjagtig kontrol af alle kritiske procesparametre (CPP'er) og integration af biofysiske sensorer, herunder pH, ledningsevne, redox og opløst ilt (DO).

Der er flere metoder, der anvendes i rækkefølge, der bruges til at øge renheden af lægemiddelstoffet (DS). Begyndende med tidlige afklarings- og ekstraktionstrin, efterfulgt af en passende metode til indfangning og første bulkisolering, derefter efterfulgt af mellemliggende og derefter afsluttende oprensningsfaser, hvoraf sidstnævnte omfatter poleringskromatografi, nano/steril filtrering, krystallisation og viral clearance (fig. 4).
Ved at eliminere forsinkelser forbundet med offline-analyse forbedrer in-situ FTIR-målinger poleringskromatografitrin ved at give øjeblikkelig feedback for at kvantificere og specificere fraktionskomponenter, herunder buffere, lægemiddelstoffer og urenheder under mellemliggende rensningstrin. Dette resulterer i forbedrede fraktionsskæringer, aggregerede eller fragmentdiskriminationer og total koncentration i realtid.
For viral clearance er enhver virus, der er til stede i den samlede og halvoprensede terapeutiske suspension, bevidst beskadiget eller pludselig misdannet til en ikke-patogen form, normalt ved at ændre miljøet omkring virussen. Styring og forfining af disse kritiske procesparametre (CPP) muliggøres af automatiserede reaktorplatforme med integrerede biofysiske sensorer. Inline procesanalytisk teknologi (PAT) er nyttig til karakterisering af urenheder i senere stadier af rensningen, da koncentrationerne generelt er højere, og det er lettere at skelne produkter i en halvoprenset matrix.
Biokonjugerede molekyler er designet til at have en øget effektivitet muliggjort af den kombinerede funktion af to eller flere forskellige terapeutiske typer molekyler. Biokonjugeret kemi kræver detaljeret proceskarakterisering og optimering. Konventionelle værktøjer som f.eks. mikrocentrifugerør, bægre, kogeplader, magnetiske rørestænger og overførselspipetter er ikke længere i stand til at opfylde reproducerbarhedskravene omkring pH, temperatur, dosering, blanding og andre parametre.
Biokonjugationskemi er afhængig af en række velkontrollerede trin i rækkefølge, som kan omfatte funktionel gruppereduktion, aktivering, API-linker-konjugation til det primære biologiske og et hvilket som helst antal vaske-, opløsningsmiddel- eller bufferudvekslingstrin hele vejen igennem (fig. 5). Biofarmaceutiske forskere anvender teknologi, der allerede anvendes i vid udstrækning i forskning og udvikling af små molekyler, såsom EasyMax automatiserede syntesereaktorer. EasyMax giver en sammenhængende arkitektur, så relevante procesparametre, herunder pH, ledningsevne, redox, temperatur, omrøring, dosering osv., kontrolleres præcist, og eksperimentelle data registreres nøjagtigt. Automatisering af biokonjugationskemi giver dataintegration, proceshændelseskorrelation, eksperimentel integritet og Design of Experiment (DoE) opskaleringsparametre.
EasyMax muliggør hurtig vurdering og fin CPP-kontrol af DoE-rum, herunder blandingsforhold, temperaturkontrol, doseringsstrategier og hastigheder. Eliminer eksperimentel variabilitet forbundet med offline, manuelle metoder og dårlige kritiske procesparameterkontroller. In-situ FTIR og Raman-spektroskopi kan give detaljerede mekanistiske oplysninger i realtid, hvilket eliminerer offline forsinkelser og prøvetagningsunøjagtigheder.


Målet med formuleringen er at overføre produktmolekylet fra et miljø, opløsningsmiddel eller anden fysisk tilstand, der bruges til at syntetisere produktet, til en form, der er acceptabel til klinisk administration på mennesker (fig. 6). Produktmolekylet er formuleret efter, hvordan det endelige produkt skal bruges via inhalation, injektion eller oral dosering. Produktets og de tilhørende hjælpestoffers langsigtede stabilitet vurderes for at sikre, at den målte dosis og de kritiske kvalitetsegenskaber (CQA'er) er inden for specifikationerne efter forarbejdning, opbevaring og forsendelse. Ud over sterilitet er det vigtigt at sikre fjernelse af urenheder og endotoksiner og forhindre nedbrydning af lægemiddelprodukter (DP) for at opretholde sikkerhed og effektivitet under fremstilling og langtidsopbevaring af et proteinterapeutisk middel.
Formulerede lægemiddelprodukter omfatter proteiner (specifikt mAb), polysaccharider, nanopartikelsystemer, organiske stoffer, oligonukleotider, genterapier og mange typer vacciner. Visse vacciner vil blive formuleret med en adjuvans, typisk en aluminiumbaseret partikel eller en organisk emulsion.Især vaccineformulering og adjuversyntese er arbejdsgange, der er godt positioneret til at drage fordel af automatiserede parallelle reaktorarbejdsstationer, digitalisering af arbejdsgange og ortogonal procesanalytisk teknologi (PAT) integration. Med realtids-PAT opnås langt mere viden om processen i stedet for kun at analysere start- og slutpunkterne.
Parallelle reaktorsystemer som EasyMax styrer alle kritiske procesparametre og integrerer inline PAT-værktøjer som ReactIR, ReactRaman™, ParticleTrack, EasyViewer og andre biofysiske sensorer. Disse teknologier bruges ofte i formulering til at karakterisere lægemiddelstof- og lægemiddelproduktstabilitet, slutkoncentration, adjuverende syntese, polymerisationer, indkapsling, adsorptioner og andre partikelhændelser.
Dutra, G., Komuczki, D., Jungbauer, A., & Satzer, P. (2020). Kontinuerlig opsamling af rekombinante antistoffer ved ZnCl2-udfældning uden polyethylenglycol. Engineering in Life Sciences, 20(7), 265-274. https://doi.org/10.1002/elsc.201900160
Forfatterne rapporterer at bruge divalente kationer, specifikt ZnCl2, til at fange og oprense monoklonale antistoffer i en udfældningsbaseret metode. På grund af tværbindingskarakteren af divalente kationer og eliminering af PEG, var viskositeten fra supernatanten og resolubiliseringsfortyndingsfaktorerne meget lav.
Ved at holde ZnCl2-koncentrationen statisk og variere pH-værdien ved hjælp af en EasyMax automatiseret laboratoriereaktor, kvantificerede forfatterne effekten af pH på udbyttet. Nedbøren blev overvåget med en ParticleTrack FBRM-sonde , og størrelsesfordelingen af proteinklynger blev målt ved den forskellige pH. De fandt, at den optimale pH for nedbøren er omkring pH 6 og 7, og at pH har stor indflydelse på størrelsen af bundfældningshobene, hvor de største klynger er forbundet med bedre udbytte. De anfører, at FBRM inline-overvågning kan bruges til at estimere de resulterende udbytter uden offline måling af den faktiske koncentration under nedbør.

Mei, C., Deshmukh, S. S., Cronin, J. T., Cong, S., Chapman, D. P., Lazaris, N., Sampaleanu, L., Schacht, U., Drolet-Vives, K., Ore, M. O., Morin, S., Carpick, B., Balmer, M. T., & Kirkitadze, M. (2019). Aluminiumphosphatvaccineadjuvans: Analyse af sammensætning og størrelse ved hjælp af Off-Line og In-Line værktøjer. Computational and Structural Biotechnology Journal, 17, 1184–1194. https://doi.org/10.1016/j.csbj.2019.08.003
Da interaktionen mellem antigenet og adjuvansen er vigtig for vaccineimmunogenicitet, undersøgte forfatterne de fysisk-kemiske egenskaber af adjuvansen, i dette tilfælde AlPO4, såsom partikelstørrelse og kemisk sammensætning. De brugte både offline-teknikker såsom Fourier-Transform Infrared (FTIR) og Raman-spektroskopi, røntgenfotoelektronspektroskopi (XPS), laserdiffraktion og inline-metoder, herunder in-situ ATR-FTIR-spektroskopi (ReactIR), Raman-spektroskopi (ReactRaman) og Focused Beam Reflectance Measurement (FBRM, ParticleTrack). Med hensyn til inline-målingerne blev partikelstørrelsesfordelingen af aluminiumphosphat og adsorberet protein undersøgt af FBRM, og sammensætningsanalyse af aluminiumphosphat blev udført ved hjælp af in-situ ATR-sonden.
Forfatterne konkluderede, at inline PAT effektivt overvåger partikelstørrelse og kemisk sammensætning for de forskellige stadier af adjuvansfremstilling, og lignende tilgange kan også bruges til at hjælpe med at vurdere konsistens fra parti til parti. De oplyser, at brugen af inline PAT understøtter avancerede fremstillingsstrategier såsom produktfrigivelsestest i realtid.
Nedenfor er et udvalg af nyere publikationer med downstream-forarbejdning inden for bioteknologi og biofarmaceutisk industri.